🇵🇱 PAŃSTWOWY INSTYTUT WETERYNARYJNY EN
MateriałyBudownictwoMikrobiologiaŻywnośćWoda i ścieki
PAŃSTWOWY INSTYTUT WETERYNARYJNY to laboratorium akredytowane przez PCA pod numerem AB 1090 (Puławy, Polska). Zakres akredytacji obejmuje 29 metod badawczych w obszarach: Materiały, Budownictwo, Mikrobiologia, Żywność. Badane obiekty to m.in.: Materiał biologiczny pochodzący od ryb, Materiał biologiczny pochodzący od ryb łososiowatych, Materiał biologiczny pochodzący od skorupiaków, Surowica zwierząt jednokopytnych. Najczęściej stosowane techniki: Etap 1: metoda namnażania i izolacji wirusa w stałych liniach komór…, Metoda RT-PCR, Metoda hodowlana z potwierdzeniem biochemicznym i mikroskopowym.
W skrócie
- Numer akredytacji: PCA AB 1090
- Liczba metod w zakresie: 29
- Rodzajów badanych obiektów: 18
- Stosowanych technik: 20
- Miasto: Puławy, Polska
- Numer akredytacji
- AB 1090
- Jednostka akredytująca
- PCA
- Adres
- - PAŃSTWOWY INSTYTUT BADAWCZY, Al. Partyzantów 57, 24-100-Puławy, Dział Parazytologii i Chorób Inwazyjnych, Chorób Pszczół i Chorób Zwierząt
- Miasto
- Puławy, Polska
Co bada to laboratorium (18)
- Materiał biologiczny pochodzący od ryb — 8 metod
- Materiał biologiczny pochodzący od ryb łososiowatych — 3 metody
- Materiał biologiczny pochodzący od skorupiaków — 2 metody
- Surowica zwierząt jednokopytnych — 2 metody
- Czerw pszczeli — 1 metoda
- Czerw pszczeli, pszczoły, miód (zapasy pokarmu cukrowego), wosk pszczeli — 1 metoda
- Izolaty larw włośni Trichinella spp. — 1 metoda
- Jelita zwierząt mięsożernych — 1 metoda
- Materiał biologiczny pochodzący od mięczaków — 1 metoda
- Nawozy organiczne — 1 metoda
- Osady ściekowe, materiał zawierający osady ściekowe — 1 metoda
- Pień mózgu bydła — 1 metoda
- Pień mózgu bydła, owiec i kóz — 1 metoda
- Próbki mięsa zwierząt gatunków podatnych na zarażenie włośniami — 1 metoda
- Pszczoły — 1 metoda
- i 3 więcej
Stosowane techniki badawcze (20)
- Etap 1: metoda namnażania i izolacji wirusa w stałych liniach komórkowych; Etap 2: metoda ELISA — 4 metody
- Metoda RT-PCR — 3 metody
- Metoda hodowlana z potwierdzeniem biochemicznym i mikroskopowym — 2 metody
- Metoda IFAT — 2 metody
- Metoda izolacji, inkubacji i obserwacji mikroskopowej — 2 metody
- Metoda Real Time PCR — 2 metody
- Etap 1: metoda namnażania i izolacji wirusa w stałych liniach komórkowych; Etap 2: metoda PCR/RFLP — 1 metoda
- Metoda filtracji, immunomagnetycznej separacji i immunofluorescencji bezpośredniej — 1 metoda
- Metoda histologiczna — 1 metoda
- Metoda hodowlana z potwierdzeniem mikroskopowym — 1 metoda
- Metoda immunohistochemiczna — 1 metoda
- Metoda makroskopowa — 1 metoda
- Metoda mikroskopowa — 1 metoda
- Metoda nested PCR — 1 metoda
- Metoda OWD — 1 metoda
- i 5 więcej
Pracownie (2)
- Dział Parazytologii i Chorób Inwazyjnych, Chorób Pszczół i Chorób Zwierząt Wodnych — 27 metod
- Dział Naukowego Wsparcia Potencjału Badawczego — 2 metody
Lokalizacje laboratorium
- Dział Parazytologii i Chorób Inwazyjnych, Chorób Pszczół i Chorób Zwierząt Wodnych — Al. Partyzantów 57, 24-100 Puławy
- Dział Naukowego Wsparcia Potencjału Badawczego — Al. Partyzantów 57, 24-100 Puławy
Zakres akredytacji — metody badawcze (29)
| Lp. | Przedmiot badań | Metodyka / Parametry | Technika | Dokument odniesienia | |
|---|---|---|---|---|---|
| Dział Naukowego Wsparcia Potencjału Badawczego | |||||
| 1 | Pień mózgu bydła, owiec i kóz | Obecność zmian morfologicznych specyficznych dla przenośnej gąbczastej encefalopatii bydła i trzęsawki owiec i kóz | Metoda histologiczna | DNW/PB-01 Wydanie 4 z dnia 2026.03.11 | |
| 2 | Pień mózgu bydła | Obecność białka prionowego specyficznego dla przenośnej gąbczastej encefalopatii bydła. | Metoda immunohistochemiczna | DNW/PB-02 Wydanie 4 z dnia 2026.03.11 | |
| Dział Parazytologii i Chorób Inwazyjnych, Chorób Pszczół i Chorób Zwierząt Wodnych | |||||
| 3 | Materiał biologiczny pochodzący od ryb | Obecność wirusa VHS | Etap 1: metoda namnażania i izolacji wirusa w stałych liniach komórkowych; Etap 2: metoda ELISA | DPI/PB-52 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 4 | Materiał biologiczny pochodzący od ryb łososiowatych | Obecność wirusa IHN | Etap 1: metoda namnażania i izolacji wirusa w stałych liniach komórkowych; Etap 2: metoda ELISA | DPI/PB-53 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 5 | Materiał biologiczny pochodzący od ryb łososiowatych | Obecność wirusa IPN | Etap 1: metoda namnażania i izolacji wirusa w stałych liniach komórkowych; Etap 2: metoda ELISA | DPI/PB-54 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 6 | Materiał biologiczny pochodzący od ryb łososiowatych | Obecność wariantu HPR0 wirusa ISA/ Obecność wariantu HPR-deleted wirusa ISA | Metoda RT-PCR | DPI/PB-60 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 7 | Materiał biologiczny pochodzący od ryb | Obecność bakterii | Metoda hodowlana z potwierdzeniem biochemicznym i mikroskopowym | DPI/PB-55 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 8 | Materiał biologiczny pochodzący od ryb | Obecność materiału genetycznego wirusa EHN | Etap 1: metoda namnażania i izolacji wirusa w stałych liniach komórkowych; Etap 2: metoda PCR/RFLP | DPI/PB-61 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 9 | Materiał biologiczny pochodzący od ryb | Obecność wirusa SVC | Etap 1: metoda namnażania i izolacji wirusa w stałych liniach komórkowych; Etap 2: metoda ELISA | DPI/PB-56 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 10 | Materiał biologiczny pochodzący od mięczaków | Obecność Marteilia sp. i Bonamia sp. | Metoda mikroskopowa | DPI/PB-57 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 11 | Materiał biologiczny pochodzący od ryb | Obecność materiału genetycznego wirusów: VHS, IHN, IPN, SVC i SAV | Metoda RT-PCR | DPI/PB-62 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 12 | Materiał biologiczny pochodzący od ryb | Obecność materiału genetycznego wirusa KHV | Metoda Real Time PCR | DPI/PB-63 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 13 | Materiał biologiczny pochodzący od skorupiaków | Obecność materiału genetycznego wirusa: WSSV | Metoda nested PCR | DPI/PB-64 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 14 | Materiał biologiczny pochodzący od skorupiaków | Obecność materiału genetycznego wirusów: YHV, TSV | Metoda RT-PCR | DPI/PB-64 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 15 | Materiał biologiczny pochodzący od ryb | Obecność materiału genetycznego wirusów: VHS, IHN, ISA | Metoda Real Time RT-PCR | DPI/PB-65 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 16 | Materiał biologiczny pochodzący od ryb | Obecność materiału genetycznego Renibacterium salmoninarum | Metoda Real Time PCR | DPI/PB-66 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 17 | Surowica zwierząt jednokopytnych | Obecność przeciwciał dla Trypanosoma equiperdum | Metoda OWD | DPI/PB-09 Wydanie 3 z dnia 2026.04.21 | |
| 18 | Surowica zwierząt jednokopytnych | Obecność przeciwciał dla Trypanosoma equiperdum | Metoda IFAT | DPI/PB-12 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 19 | Surowica zwierząt | Obecność przeciwciał dla Toxoplasma gondii | Metoda IFAT | DPI/PB-14 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 20 | Jelita zwierząt mięsożernych | Obecność tasiemców z rodzaju Echinococcus | Metoda SCT | DPI/PB-13 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 21 | Próbki mięsa zwierząt gatunków podatnych na zarażenie włośniami | Obecność larw włośni Trichinella spp. | Metoda wytrawiania próbki zbiorczej z zastosowaniem magnetycznego mieszania; Metoda referencyjna | PN-EN ISO 18743:2015-11 | PN-EN ISO 18743:2015-11/ A1:2024-02 | |
| 22 | Nawozy organiczne | Obecność żywych jaj pasożytów jelitowych Ascaris spp., Toxocara spp., Trichuris spp. | Metoda izolacji, inkubacji i obserwacji mikroskopowej | PN-Z-19006:2023-04 | |
| 23 | Osady ściekowe, materiał zawierający osady ściekowe | Obecność i liczba żywych jaj pasożytów jelitowych Ascaris spp., Toxocara spp., Trichuris spp. | Metoda izolacji, inkubacji i obserwacji mikroskopowej | PN-Z-19005:2018-10 z wykorzystaniem I-01/DPI/PN-Z-19005:2018-10 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 24 | Wyroby konsumpcyjne przeznaczone dla ludzi w tym żywność / mięso ryb | Obecność Anisakis spp. | Metoda wytrawiania | PN-EN ISO 23036-2:2021-10 | |
| 25 | Izolaty larw włośni Trichinella spp. | Obecność specyficznego DNA larw włośni | Metoda PCR | DPI/PB-16 Wydanie 3 z dnia 2026.01.16 | |
| 26 | Woda | Obecność pierwotniaków pasożytniczych z rodzaju Cryptosporidium i Giardia | Metoda filtracji, immunomagnetycznej separacji i immunofluorescencji bezpośredniej | DPI/PB-17 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 27 | Pszczoły | Obecność roztoczy Varroa destructor | Metoda makroskopowa | DPI/PB-43 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 28 | Czerw pszczeli, pszczoły, miód (zapasy pokarmu cukrowego), wosk pszczeli | Obecność bakterii Paenibacillus larvae | Metoda hodowlana z potwierdzeniem biochemicznym i mikroskopowym | DPI/PB-44 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
| 29 | Czerw pszczeli | Obecność bakterii Melissococcus plutonius | Metoda hodowlana z potwierdzeniem mikroskopowym | DPI/PB-45 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16 | |
Normy referencyjne (29)
DNW/PB-01 Wydanie 4 z dnia 2026.03.11
DNW/PB-02 Wydanie 4 z dnia 2026.03.11
DPI/PB-09 Wydanie 3 z dnia 2026.04.21
DPI/PB-12 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-13 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-14 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-16 Wydanie 3 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-17 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-43 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-44 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-45 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-52 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-53 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-54 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-55 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-56 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-57 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-60 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-61 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-62 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-63 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-64 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-65 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
DPI/PB-66 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
PN-EN ISO 18743:2015-11
PN-EN ISO 18743:2015-11/ A1:2024-02
PN-EN ISO 23036-2:2021-10
PN-Z-19005:2018-10 z wykorzystaniem I-01/DPI/PN-Z-19005:2018-10 Wydanie 2 z dnia 2026.01.16
PN-Z-19006:2023-04